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Title: Micropropagação e anatomia foliar de Canela-de-Ema (Vellozia flavicans Mart. ex Schult f.-Velloziaceae) em diferentes condições ambientais
Authors: Freitas Neto, Olegário Garcia de
Orientador(es):: Silveira, Conceição Eneida dos Santos
Gomes, Sueli Maria
Assunto:: Anatomia vegetal
Germinação
Cerrados
Issue Date: Apr-2009
Data de defesa:: Apr-2009
Citation: FREITAS NETO, Olegário Garcia de. Micropropagação e anatomia foliar de Canela-de-Ema (Vellozia flavicans Mart. ex Schult f.-Velloziaceae) em diferentes condições ambientais. 2009. 72 f., il. Dissertação (Mestrado em Botânica)-Universidade de Brasília, Brasília, 2009.
Abstract: A canela-de-ema (Vellozia flavicans Mart. ex Schult. f.) é um arbusto nativo do Cerrado brasileiro que apresenta grande potencial ornamental. Limitações no cultivo convencional e o crescimento lento justificam a utilização de técnicas da cultura de tecidos para a propagação da espécie. O objetivo do presente trabalho foi de estabelecer um protocolo de micropropagação de para canela-de-ema. Foram testadas sementes armazenadas por seis meses e recém coletadas. Todas as sementes foram desinfestadas em fungicida carbendazim (nome comercial Derosal®), 300 mL.L-1 em água, por imersão durante 24 h, seguido de álcool 70% por 1 min e solução de hipoclorito de sódio comercial a 2-2,5%, contendo 300 μL de Tween 80 por 100 mL de solução durante 20 min. As sementes armazenadas foram inoculadas em meio MS com 0% e 3% de sacarose nas temperaturas de 15, 20, 25, 30 e 35 ºC. A melhor porcentagem de germinação foi obtida entre 25 ºC e 35 ºC com ou sem sacarose. As sementes recém coletadas foram inoculadas em meio MS com diferentes concentrações de sacarose 0, 1, 2, 3, 4, 5 e 6%. A maior porcentagem de germinação foi observada no meio de cultura sem sacarose. A diferença entre a germinabilidade das sementes armazenadas e recém coletadas indicam perda de viabilidade. Na fase de multiplicação as partes aéreas de plantas de 30 dias de cultura, oriundas de germinação asséptica, foram inoculadas em meio MS com 1,48 μM de AIB (exceto no controle sem fitorreguladores) e três concentrações de BAP (0,0; 2,22 e 4,44 μM) combinadas com CIN (0,0; 2,32 e 4,64 μM), em três subculticos, de 40 dias cada, formando um fatorial 3x3x3. O pH foi ajustado a 5,7±0,1 e 20 g.L-1 de sacarose e 8 g.L-1 de ágar foram adicionados ao meio. O delineamento experimental foi inteiramente casualisado. O maior número de brotos foi obtido com 4,44 μM de BAP combinado com 1,48 μM de AIB no terceiro subcultivo. Na fase de alongamento, as diferentes concentrações de AG3 (5,77; 11,54 e 17,32 μM) testadas, combinadas com 2,32 μM de CIN e 2,46 μM AIB, não influenciaram significativamente os brotos de V. flavicans. O enraizamento e a aclimatização foram testados ex vitro, em câmara de crescimento e em casa de vegetação. As bases dos brotos foram tratadas com AIB (1000 ppm) ou gel enraizante da marca Selagel®; nos brotos controle não foi aplicado nenhum tratamento O enraizamento ex vitro e a aclimatização apresentaram percentuais acima de 40% em todos os tratamentos. Todas as plantas aclimatizadas sobreviveram após a transferência para o viveiro. A análise anatômica mostra que as raízes adventícias se diferenciam na região do periciclo e nos feixes vasculares, indicando que a vascularização da raiz está conectada com a do caule. _________________________________________________________________________________ ABSTRACT
Canela-de-ema (Vellozia flavicans Mart. ex Schult. f.) is a shrub native of Brazilian Cerrado and presents great potential ornamental. Limitations in the conventional cultivation and the slow growth of the plant justify the use of techniques of tissue culture to propagate the species. The objective of this study was to establish a protocol for micropropagation of canela-de-ema. Six month-old and recently collected seeds were tested. All seeds were disinfected with carbendazim (trade name Derosal ®) fungicide diluted to 300 mL.L-1 in water for 24 h, and rinsed in 70% alcohol for 1 min. Additionally, the seeds were soaked in commercial bleach with 2-2.5% of active chlorine containing of Tween 80 (3 mL.L-1) for 20 min. The six-month old seeds were inoculated in MS medium with 0% and 3% sucrose and cultivated at 15, 20, 25, 30 and 35 oC. The best percentage of germination was obtained between 25 °C and 35 °C with or without sucrose. The freshly collected seeds were inoculated in MS medium with different sucrose concentrations: 0, 1, 2, 3, 4, 5 and 6%. The highest percentage of germination was observed in the culture medium without sucrose. The difference between the germination of six-month old and newly collected seeds indicate that occurred a loss of seed viability. In the multiplication phase, after 30 days the aerial parts of the plants were inoculated in MS media containing different concentrations of BAP (0.0, 2.22 and 4.44 μM) combined with KIN (0.0, 2.32 and 4.64 μM) plus IBA 1.48 μM in all combinations, except the control treatment. The medium pH was adjusted to 5.7-5.8, 20 g.L-1 sucrose and 8 g.L-1 agar. The experimental design was randomized, in three successive subcultures of 40 days each. The highest number of sprouts was obtained with 4.44 μM of BAP and 0.00 μM of KIN in the third subculture. Different GA3 concentrations (5.77, 11.54 and 17.32 μM) were tested in combination with 2.32 μM of KIN and 2.46 μM IBA. Results showed no influence of these growth regulators in the elongation of V. flavicans shoots. Ex vitro rooting and acclimatization were done in growth chamber and the greenhouse. For that, basal region of the shoots were treated with IBA (1000 ppm) or rooting gel Selagel®; and the control treatments had no growth regulators. The rooting ex vitro and acclimatization showed more than 40% of success in all treatments. All acclimatized plants survived after transferred to the nursery. The anatomical analysis showed that the adventitious roots differentiated in the pericycle/endodermis region as well as from the vascular bundles, indicating that the vascularization of the roots is connected to the stem vasculature.
Description: Dissertação (mestrado)—Universidade de Brasília, Departamento de Botânica, 2009.
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